친 화성 크로마토 그래피 미디어

Cellufine2제품인산염

mRNA 약물 합성을위한 효소 인 T7 RNA 폴리머 라제와 같은 핵산 결합 단백질의 정제를위한

Cellufine Phosphate는 농도, 단백질의 정제 및 핵산 관련 단백질과 같은 효소를 위해 설계된 친 화성 배지입니다 매체의 염기는 포스페이트 에스테르와 기능화 된 구형 및 강성 셀룰로오스이다 mRNA 약물의 신타 제인 T7 RNA 폴리머 라제는 핵산-결합 단백질이다

셀 루핀 슬롯 사이트의 리간드 구조
그림 1셀 루핀 포스페이트의 부분 구조
특성
지원 매트릭스 Cellulose
리간드 포스페이트 에스테르
리간드 conc 03-08meq/ml
흡착 용량 ≧ 20mg/ml-gel (Lysozyme)

T7 RNA 폴리머 라제의 정제 예

T7 RNA 폴리머 라제는 시험 관내 전사에서 주형 DNA로부터 mRNA를 합성하는 데 사용되는 중요한 RNA 신타 제이다

T7 RNA 폴리머 라제 슬롯 사이트의 크로마토 그램
그림 2 포스페이트와 T7 RNA 폴리머 라제의 정제

Cellufine Max Deae로 정화 한 후,

표 2 컬럼 후 각 분획에서 T7 RNA 폴리머 라제의 회복
fraction 효소 활동
(단위/단백질)
효소 회복
(%)
단백질 회복
(%)
로드 샘플 94043 100 100
Flowthrough Fraction 2763 1.8 59.8
용리 분획 267034 70.2 24.7

표 1은 셀 루핀 포스페이트로 컬럼 정제 후 효소 활성 및 단백질 회복을 보여줍니다 (그림 1)


셀 루핀 포스페이트 슬롯 사이트 후 SDS-PAGE
셀 루핀 포스페이트 정제 후 그림 3 SDS-PAGE

1 : Lysate, 2 : 암모늄 설페이트 침전, 3 : 셀 루핀 Max Deae의 용리 분율, 4 : 셀 루핀 포스페이트의 용리 분율, 5 : 대조군

정제 정도는 셀루 핀 MAX DEAE 및 셀 루핀 포스페이트의 각 정제 과정으로부터 얻은 분획을 사용하여 SDS-PAGE에 의해 평가되었다

셀 루핀 포스페이트의 기공 크기

Cellfine Phosphate 기공 크기 특성
그림 2셀루 핀 포스페이트 및 기존의 셀룰로오스의 교정 조각

CIP 안정성 테스트

Cellufine Phosphate는 Alkali에 의해 제자리에 청소 (CIp)에 안정적입니다

셀 루핀 슬롯 사이트의 반복 사용 테스트 데이터, 02 m NAOH를 사용한 클리닝 장소 테스트
그림 3CIP 조건 : 02mol/L NAOH 3CV 005M 포스페이트 완충액, PH7 5CV
Cellufine 인산염을 가진 DNA- 결합 단백질 Rusa D70N의 슬롯 사이트 데이터
그림 4rus에서 셀 루핀 포스페이트 사용 D70n 정제

크로마토 그래피

16x10cm (20ml) 셀 루핀 포스페이트로 포장
유량
3ml/min (90cm/h)
샘플
75mg의 rusa d70n heparin-sepharose 크로마토 그래피 후 획득
그라디언트
50mm tris-HCL pH 80에서 01에서 13m NaCl의 200ml

SDS-PAGE

Novex 4-12%BT 겔 MES-SDS 런닝 버퍼 (Invitrogen)
젤의 키
1 셀 프리 추출물
2 헤파린-세 파로스 컬럼에서 2 개의 바운드 재료
3 Heparin-sepharose 컬럼에서 얻은 Rusa 샘플
Cellufine Phosphate에서 용리 된 피크의 4-6 분획
7 RUSA 참조 샘플
8 마크 12 MW 표준 (Invitrogen)

9기술 정보
Nucleic Acids Research, 2006, vol 00, No 00 1–8
Rachel MacMaster, Svetlana
Rusa

이 데이터는 Sheffield University의 Svetlana Sedelnikova 박사의 예의에 의해 수행되었습니다

셀 루핀 슬롯 사이트의 단백질 분리 패턴
그림 5혼합 샘플 분리
열 크기
ID 11 cm - 높이 10 cm
유량
2 ml/min (126cm/h)
버퍼
001m 아세테이트 완충, ph48
용리
0 ~ 1 mol/l NaCl Gradient

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